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헤르페스의 진단은 현대 분자 생물학적 방법이 HHV-6과 HHV-7을 포함, 모든 헤르페스 바이러스 군을 진단 할 수 있습니다 (PCR, 도트 하이브리드)를 사용하여 확대경 연구를 수행, 민감한 세포 배양, 면역 혈청 학적 방법의 고전적인 바이러스 발산의 행위에 근거 유형.
헤르페스 감염의 실험실 진단 방법
HSV를 분비하거나 바이러스 입자 및 / 또는 그 성분을 검출하기위한 주요 방법 |
인체의 체액에서 HSV에 대한 항체 검출을 목표로하는 보조 방법 |
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76 %의 환자에서 HSV-2에 의한 생식기 포진 (GH)이 있으며 HSV-1 형의 경우 24 %에서 나타납니다. 그리고 단일 감염으로 인한 GG는 환자의 22 %에서만 발생했으며, 78 %에서 미생물 학적 연관성이 발견되었습니다. 46 %의 환자에서 두 종류의 병원균에 의한 기생충 침착이 발견되었으며, 클라미디아가 40 %에서 발견되었다. 얼룩에서 덜 자주 gardnlly, Trichomonas, gonococci 결정했습니다.
27 %의 환자에서 기생충 침착은 3 명, 4 병원체는 5.2 %로 나타났다. 그리고 더 자주 클라미디아와 가디 넬라 (Gardnerella) 및 칸디다 균 (Candida fungi)의 병용 요법이있었습니다. 이 데이터는 병원성 에이전트 조합을 식별하기 위해 환자 YY의 철저한 세균 검사의 필요성뿐만 아니라, HSV 감염의 차별화 된 복잡한 치료를 허용 할 것 비뇨 생식기 계통의 혼합 감염의 병인에 대한 심층 연구를 정당화.
헤르페스 병변의 국소화에 따른 HSV 분리에서 연구해야 할 물질
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세포 스크래핑 |
SDC |
기관지에서 흡인하다. |
Bioptat |
피 | |||
1 |
2 |
3 |
4 | ||||||
가죽 |
+ |
+ | |||||||
눈 |
+ |
+ | |||||||
생식기 |
+ |
+ | |||||||
항문 |
+ |
+ |
+ | ||||||
입 |
+ |
+ |
+ | ||||||
CNS |
+ |
+ |
+ |
+ | |||||
경량 |
+ |
+ |
+ | ||||||
간 |
+ |
+ | |||||||
선천성 |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
거대 세포 바이러스 감염의 실험실 진단 방법
방법 |
결과를 얻는 데 필요한 시간 |
메모 |
바이러스 성 | ||
전자 현미경 |
3 시간 |
토핑 |
세포 배양에서 바이러스의 분리 (CPD) |
4-20 일 |
표준, |
단클론 항체를 이용한 초기 AH의 면역 형광 염색 |
6 시간 |
덜 |
체학 |
2-3 시간 |
덜 |
유적 | ||
RSK |
2 일 |
Standart |
Ssubsistence |
1 일 |
인내심있는 |
REEF |
6 시간 |
단순하고 |
NFIF |
6 시간 |
복잡한 |
RIMF |
6 시간 |
복잡한 |
IFA (IgM, TO) |
6 시간 |
빠르고 간단하다. |
면역 블롯 |
6 시간 |
비싼 |
분자 생물학 | ||
MG |
5-7 일 |
값 비싸고 |
PCR |
3 시간 |
비싼 |
대상 포진 바이러스를 진단하는 방법
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실험실 |
간접적 인 | |
할당 |
패브릭 배양, 닭 배아, 실험용 동물, 허용 세포 또는 헬퍼 바이러스와의 공동 배양 |
분리 물의 동정 |
중화 반응, DSC, IF, IPPE, 침전 분리 물의 반응, 응집, IF |
직접 | |
세포학 |
스미어 : 컬러 면역 형광 |
조직학 |
세포의 Pathomorphology |
구조 |
배아 현미경, 면역 전자 현미경 |
항원 결정 |
IF, PIÉF, RIM, IFA |
항체의 국부적 인 생산의 결정 |
IgM, IgG, IgA : IFA, RIA |
분자 생물학적 접근법 |
분자 교잡, PCR |
대상 포진 바이러스에 의한 감염의 검사실 진단
진단 |
방법 |
예상 결과 |
급성 일차 감염 |
1 |
2 시간 후 감지 |
2 |
항체의 양은 천천히 증가합니다. | |
3 |
감염 3 일 후 선물 | |
급성 |
1 |
2 시간 안에 ULV 탐지 |
2 |
항체의 양은 천천히 증가합니다. | |
4 |
발진 4 일 후 현재 |
- WIEF의 소낭 액에서의 측정;
- 혈청 검사 : DSC, ELISA
- 혈청학 : IgM 검출을 목표로 한 ELISA;
- 혈청학 : ELISA, IgA, IgM 검출을 목표로 함.
대상 포진 바이러스에 의한 감염의 면역 반응을 나타내는 방법
접근 |
방법 |
두 번째 혈청에서 증가 된 항체가의 검출 |
RSK, RTGA, RPGA, 중화 반응 IF, RIM, ELISA |
첫 번째 혈청 샘플에서 Ig G, Ig A 클래스 - 특이 적 항체의 검출 |
IFA, IF, RIM, 라텍스 응집체 |
헤르페스 바이러스 감염에 대한 환자 혈청의 혈청 검사 결과 해석 (ELISA)
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감염의 평균 임계 값 | |
분석 결과 |
통역 | |
Cytomegaly Anti-CMV IgG (1-20 E / ml) 항 -MVV IgM (100-300 %) |
양성 1-6 양성 6-10 양성> 10 |
사해 |
Herpes simple 1,2 serotypes |
양수 100-400 양성 400-800 양성> 800 |
사해 |
이 표는 헤르페스 바이러스 감염의 실험실 진단에 대한 주요 방법을 제시하며 헤르페스 병변의 위치를 고려하여 HSV의 격리에서 연구되는 생물학적 물질을 권장합니다
신뢰할 수있는 민감한 세포 배양의 감염을 통해 헤르페스 단순 및 CMV의 할당입니다. 따라서 26 명의 재발 환자의 바이러스 검사에서 민감한 Vero 세포 배양에서 23 명 (88.4 %)에서 HSV가 분리되었다. 감염된 배양 물에서 다핵 거대 세포가 형성되거나 둥글거나 커진 세포가 낱포 형태로 축적되어 HSV의 세포 변성 작용 패턴이 관찰되었다. 증례의 52.1 %에서 감염 후 16-24 시간까지 바이러스의 세포 변성 효과의 초점을 탐지하는 것이 가능했다. 감염된 배양 물의 배양 48-72 시간까지, 특정 세포 파괴를 일으키는 물질의 비율은 87 %로 증가했다. 또한 13 %만이 감염된 후 96 시간이 지난 후에 양성 결과가 나타 났으며 반복적 인 양성 반응을 보였습니다.
일반화 된 포진 감염의 실험실 진단 방법
헤르페스 바이러스, 그 입자 및 그 성분의 검출 (격리)을 목표로하는 주요 방법 |
체액에서 헤르페스 바이러스에 대한 항체를 검출하고 혈청의 효소 이동을 검출하는 보조 방법 |
감수성 세포 배양 및 동물에 헤르페스 바이러스의 분리 |
중화 |
전염성 단핵구증 (VEB로 인한 감염)을 진단하기 위해 혈청 학적 방법이 사용됩니다. Paul Bunnel과 숫양의 적혈구의 반응, 1 : 28 이상의 진단 역가는 혈청 단일 검사 또는 혈청 검사에서 항체의 4 배 증가. Goff-Bauer 반응을 말의 정립 된 4 % 적혈구가 정지 된 상태로 사용하십시오. 결과는 2 분 후에 고려되며 전염성 단핵구증으로 반응은 매우 특이합니다.
현재 전염성 단핵구증을 진단하기 위해 효소 면역 측정법 (ELISA)이 개발되고 있습니다. 이 경우, 환자의 혈청에서 IgG 및 IgM 항체는 EBV 감염 림프구와 함께 배양 한 다음 형광 항체로 처리하여 결정한다. 질병의 급성기에, 바이러스 캡시드 항원에 대한 항체가 1 : 160 이상의 역가로 결정된다.
개미 에간 EBV 봉투 항체에 대한 항체를 EBV, 질병의 급성기 및 핵 및 세포질 결정 EBV의 초기 항원에 대한 전체 항체의 초기 항원 및 제한된 항체 : 식별 할 IFA 수입 상용 테스트 시스템들을 사용할 때 EBV 조기 질병의 급성기 및 핵 및 세포의 세포질에서 결정된, EBV 핵 항원에만 세포의 세포질에서 병 속에서 결정 EBV 초 항원에 대한 항체 및 항체를 경계. 이 테스트 시스템을 사용하여 EBV와 관련된 질병의 숫자의 감별 진단을 할 수 있습니다.
P23, P54, P72 (단백질의 존재가 재생 EBV의 가능성을 시사한다), P (138) 말했다 긍정적 ELISA 후 EBV 마커 단백질 (p-단백질)을 분리하는 항체의 존재를 검출 EBV가 면역 확인 응답을주는 항체를 식별하는 치료의 효과를 모니터링하기위한 실험 방법을 사용하여 위.
바이러스 학적 방법의 민감도는 85-100 %이고 특이도는 100 %이며 연구 시간은 2-5 일입니다. 실제로 자주 HSV-1, HSV-2에 대한 모노클로 날 항체 또는 폴리 클로 날 직접 면역 형광 (PIF) 방법. UIF 방법은 기존의 임상 실험실에서 쉽게 재현 할 수 있으며 비용이 많이 들지 않고 감도가 80 % 이상이고 특이도는 90-95 %입니다. 면역 형광 현미경으로 세포질 흠, 형태 학적 특징의 존재를 밝혀, 번짐에 감염된 세포의 비율은, 요도, 자궁 경관, 자궁 경부, 항문을 긁는.
UIF 방법은 세포의 형태 학적 특성과 HSV 항원의 위치의 변화에 대한 아이디어를 제공합니다. 포진 바이러스 (특정 발광 검출)에 의한 세포 손상의 직접적인 징후 이외에, UIF 데이터에 따라 포진 감염의 간판이 있습니다.
- 핵 물질의 집합체, karyoolma의 각질 제거;
- 소위의 존재. 오직 하나의 핵이 세포의 핵으로부터 남아있을 때 "핵"구멍들;
- Caudry 's 종아리의 핵 내포물의 존재.
UIF 의사를 설정하는 것은뿐만 아니라 품질뿐만 아니라 우리가 아시클로버 (AC)와 항 바이러스 치료의 효과를 평가하기 위해 사용 된 감염된 세포의 정량적 평가를받을 때. 따라서 단순 생식기 포진 (GG) 환자 80 명을 UIF 방법으로 역학 조사 하였다. 이것은 환자의 88 %가 스미어에 아시클로버의 1 개 코스의 경우 31 %에서 검출 건강한 세포를 가진 환자의 44 % 후에 감염된 세포 (상기 50-75 %에서)의 높은 비율을 가지고 종래 얼룩의 시클로 비르 치료에, 만약 개별 감염된 세포 표시되어 도시되고 환자의 25 %는 감염된 세포를 10 %까지 가지고있었습니다.
생식기 포진 환자의 스미어 (PIF 반응) 감염된 세포의 함량은 acyclovir
질병 기간 |
얼룩이있는 백분율 | |||||
감염된 세포 |
정상 | |||||
이상 |
50-75 % |
40-50 % |
10 % |
N / sp의 단일 셀 | ||
재발 (치료 전) |
25 % |
63 % |
12 % | |||
(20) |
(50) |
(10) | ||||
치료 (치료 후) |
25 % |
31 % |
44 % | |||
(20) |
(25) |
(35) |
다년간의 UIF와 도트 하이브리드 화 방법을 사용하여 거의 100 %의 사례가 연구 결과와 일치했습니다. 무증상 및 헤르페스의 malomanifestnyh 형태가 특히 경우에 GH의 진단의 신뢰성을 높이기 위해,이 불이익을 산과 역사, 지정되지 않은 부인과 진단 사람들과 임산부, 여성 검사 특히, 실험실 진단의 2-3 방법을 사용하는 것이 좋습니다 주목해야한다.
따라서, 비뇨 생식기의 바이러스 성 박테리아 감염에 대한 PCR 진단을 할 때, 질병의 특정 임상 증상의 존재 (또는 부재)를 고려하여 얻은 양성 결과를 평가할 필요가 있습니다. PCR로 클라미디아가 발견되면 감염에 대해 이야기하고 그에 따라 치료 문제를 해결할 수 있습니다. 기회 주의적 미생물 인 마이코 플라스마 (ureaplasmas) 검출의 경우, 환자의 민감한 세포 배양에 대한 물질의 파종이라는 진단을 확인하기 위해 추가적인 배양 연구가 필요합니다. 문화 분석에서 양성 결과가 얻어진 경우에만 마이코 플라스마 증 진단에 대한 실험실 확인에 관해 말할 수 있습니다. 같은 방법으로 필요할 경우 자주 사용되는 의약 형태 (항생제, 플루오로 퀴놀론 등)에 대한 분리 된 마이코 플라즈마의 민감도를 결정할 수 있습니다.
아마도 Nepresviridae 계통의 여러 바이러스에 의한 1 단계 감염 일 것입니다. 종종 한 명의 환자가 HSV-1, HSV-2 및 CMV 바이러스에 감염되는 것을 발견했습니다. 몇 차례의 헤르페스 바이러스에 감염된 경우가 2 차 IDS (온 콜라 학, 종양학, HIV 감염 환자)의 임상 및 실험실 발현 환자였습니다. 따라서, HIV 감염으로 진행되는 임상 적 및 면역 학적 장애는 분자 교잡에 의해 검출 된 헤르페스 바이러스의 수의 증가를 동반하는 것으로 나타났다. 이 예후에 가장 중요한 것은 HSV-1, CMV 및 HHV-6 유형의 DNA의 복잡한 1 단계 검출로 간주 될 수 있습니다.